大腸桿菌感受態細胞的制備和質粒轉化
發布時間：2025-07-04 瀏覽次數：158
大腸桿菌宿主菌株作為受體細胞，當這些受體細胞經過(CaCl2)處理時，它們的細胞膜通透性會發生暫時性的改變，從而成為能夠允許外源DNA分子進入的感受態細胞。
一、感受態細胞
1.感受態：受體細胞最容易接受外源基因并將其轉化的一種生理狀態。
2.感受態細胞：受體細胞通過理化方法處理，使其處于最適攝取和容納外來DNA的生理狀態的細胞。
3.感受態菌齡：細胞的感受態一般出現在對數生長期，新鮮幼嫩的細胞是制備感受態和實現成功轉化的關鍵。
4.質粒轉化：質粒DNA或以他為載體構建的重組子導入細菌的過程。
二、感受態細胞制備的原理
1.外源基因表達的條件：重組質粒必須通過轉化進入細菌細胞內，才能進行擴增和表達，從而獲得大量的克隆基因。
2.感受態制備原理：將快速生長的大腸桿菌置于經低溫0℃預處理的低滲氯化鈣溶液中，便會造成細胞膨脹（滲透作用），同時，Ca2+會使細胞膜磷脂雙分子層形成液晶結構，促使細胞外膜與內膜間隙中的部分核酸酶解離開來，離開所在區域，誘導細胞成為感受態細胞。
3.質粒轉化原理：感受態細胞細胞膜通透性發生變化，極易與外源DNA相粘附并在細胞表面形成抗脫氧核糖核酸酶的羥基-磷酸鈣復合物。將該體系轉移到42℃下做短暫的熱刺激90s，細胞膜的液晶結構會發生劇烈擾動，并隨機出現許多間隙，外源DNA就可能被細胞吸收。
4.外源基因表達：進入細胞的外源DNA分子通過復制、表達，實現遺傳信息的轉移，使受體細胞出現新的遺傳性狀。將轉化后的細胞在選擇性培養基上（相應抗生素抗性）培養，篩選出帶有外源DNA分子的陽性克隆。
三、感受態細胞的制備（CaCl2法）
1. 受體菌種活化：取-80℃冰箱中保藏的菌株（如DH5α、Top10、DE3、BL21等）在LB平板（無抗性）上劃線分離，放置于37℃恒溫培養箱中倒置培養。
2. 受體菌培養：從LB平板上挑取單菌落，接種于10mL LB液體培養基中，37℃震蕩培養12h左右至對數生長中后期。
3. 菌種的準備：將受體菌菌懸液以2%的接種量接種于裝有20mL LB液體培養基（無抗性）中，37℃震蕩培養大約2-3h至OD600=0.4-0.5，菌落數＜108cfu/mL。
4. 感受態細胞的制備：
(1)離心：把上述菌液轉移至50mL離心管中，冰浴10min，在4℃，3000r/min，離心10min。
(2)重懸冰浴：棄上清液，加入10mL預冷的0.05M 的CaCl2溶液，輕輕混勻，冰浴30min后，在4℃，3000r/min，離心10min。
(3)重懸：棄上清，加入6mL預冷的含15%甘油的0.05MCaCl2溶液，輕輕混勻，冰上放置幾分鐘，即成感受態細胞懸液。或棄上清，加入6mL預冷0.05MCaCl2溶液，輕輕混勻，冰上放置幾分鐘，即成感受態細胞懸液，直接使用。
(4)分裝：用移液槍分裝重懸液至1.5mL離心管中，每個離心管中分裝50μL懸浮液。
(5)保藏：標記貼標簽，使之迅速冷凍，-80℃保藏備用。
五、質粒化學轉化
1.取感受態：如果感受態細胞保藏于-80℃，從-80℃冰箱中取一支感受態，室溫下解凍后立即冰浴；如果感受態細胞沒有保藏，可以直接用于轉化。
2.質粒處理：一般質粒為粉末，1ng質粒添加10μL緩沖液或蒸餾水，混勻。
3.轉化：在含有50μL感受態細胞的離心管中加入1μL稀釋后的標準質粒充分混勻，冰上靜置30min。
4.熱擊：將離心管置于42℃熱擊60-90s，然后迅速冰浴，使細胞冷卻2-3 min。
5.培養：向離心管中加入已預熱的無菌LB培養基（無抗性）300μL，150rpm、37℃恒溫震蕩培養45min。
6.涂布：吸取100μL菌液于LB固體培養基上（含抗性），用涂布器均勻涂布，放置于37℃恒溫培養箱中倒置培養12-16h。
7.轉化率計算：
轉化后在含抗生素的平板上長出的菌落即為轉化子，根據此皿中菌落數可計算出轉化子總數和轉化效率，公式如下：
轉化總數=菌落數×稀釋倍數×轉化反應原液總體積/涂板菌液體積
轉化率=轉化子總數/質粒DNA加入量μg
理論上轉化率最高為每微克的標準質粒轉化的菌落數為1×1010 。
六、注意事項
1. 嚴格無菌操作
操作過程，注意進行無菌操作，避免環境中雜菌污染。
2.嚴格控制溫度
操作過程，要注意操作溫度，以保持細胞的狀態；
加入抗生素時注意溫度，避免過高溫度導致抗生素失活。
3. 嚴格控制濃度
嚴格控制細胞的生長階段和菌濃，嚴格控制質粒DNA的質量和濃度，以提高轉化效率。
4. 計算轉化率
記錄和計算轉化率的指標如轉化子總數、感受態細胞總數和轉化頻率以評估轉化效率。
本文由環凱轉載自“微生物知識庫”GZH，版權歸原作者~所有，僅供學習參考，如有侵權請聯系刪除！
